Определение взаимосвязи исходного количества клеток CD8+-популяций с пятилетней безрецидивной и общей выживаемостью пациенток с трижды негативным раком молочной железы
Исходный уровень иммунологического показателя у конкретного больного определялся как "повышенный" или "сниженный" по отношению к значению медианы (на рисунках обозначена как Me) этого показателя для каждой изученной популяции (табл. 4).
Таблица 4. Значения медиан численного состава популяций СD8+-лимфоцитов, использованные для определения повышенного или сниженного уровня показателя у конкретного больного
Полученные результаты показали, что статистически значимых различий в безрецидивной (БРВ) и общей выживаемости (ОВ) между группами пациенток с повышенным или сниженным исходным количеством клеток всей популяции CD8+-лимфоцитов (рис. 1А, Б), а также CD3+CD8+-Т-клеток (рис. 1В, Г) не наблюдалось. Однако у больных, у которых процент CD8+-лимфоцитов был повышен, отмечалась тенденция к более благоприятному течению заболевания, чем у пациенток со сниженным показателем. Так, в соответствии с кривыми БРВ, через 30 месяцев 75 % пациенток с повышенным показателем не имели рецидива, в то время как у больных с пониженными значениями уровня CD8+-клеток рецидив не развился только у 55 % больных. Частота развития рецидивов заболевания у пациенток с повышенной величиной этого показателя составляла 26,8 % (11/41), а с пониженным - 41,9 % (13/31), p = 0,212. Различия в БРВ и ОВ между группами пациенток с повышенным или сниженным количеством CD3+CD8+-Т-клеток также были статистически незначимыми (рис. 1В, Г). Максимальное различие в количестве больных с рецидивом в зависимости от уровня CD3+CD8+-Т-клеток наблюдались ближе к концу наблюдения (примерно после 42-43 мес): при количестве этих клеток > Me ПЗ наблюдалось у 25,6 % больных, а при показателе < Me - у 42,4 % больных (рис. 1В, Г).
Рис. 1. Взаимосвязь пятилетней безрецидивной (А, В) и общей (Б, Г) выживаемости больных трижды негативным раком молочной железы с исходным количеством CD8+- (А, Б) и CD3+CD8+-лимфоцитов (В, Г) до начала химиотерапии
Здесь и на рис. 2, 4: синяя линия - процент лимфоцитов > Me; красная линия - процент лимфоцитов < Me; L-R - логранговый критерий; WCX - критерий Вилкоксона. Медианы БРВ и ОВ в обеих группах не достигнуты.
Характер кривых БРВ и ОВ в зависимости от исходного процента CD8+CD28--лимфоцитов представлен на рисунке 2 (рис. 2В, Г). Процент больных без ПЗ или живых пациенток практически не зависел от исходного уровня данного показателя. Статистически значимое увеличение частоты БРВ (по критерию Вилкоксона, выявляющему ранние различия в вероятностях выживания) и ОВ (по логранговому критерию, определяющему поздние различия в вероятностях выживания) было обнаружено у пациенток с повышенным до лечения процентом CD8+CD28+-Т-лимфоцитов (> 9,0 %) по сравнению с больными со сниженным показателем (< 9,0 %) (рис. 2 А, Б). Максимальные различия в проценте больных без прогрессирования заболевания наблюдались на 28-30-е месяцы наблюдения: 80 и 53 % соответственно, а максимальные различия в частоте живых пациенток на более поздние сроки - после 46 мес наблюдения: 86 и 58 %, соответственно (рис. 2А, Б). Частота развития рецидивов заболевания у пациенток с повышенной величиной этого показателя составляла 22,2 % (8/36), а с пониженным - 44,4 % (16/36); p = 0,079.
Рис. 2. Взаимосвязь пятилетней безрецидивной (А, В) и общей (Б, Г) выживаемости больных трижды негативным раком молочной железы с исходным количеством CD8+CD28+ (А, Б) и CD8+CD28− (В, Г) лимфоцитов до начала химиотерапии
Значительное увеличение частоты БРВ ассоциировалось также с повышенной величиной соотношения CD8+CD28+/CD8+CD28- (рис. 3А, Б). Частота развития рецидивов заболевания у пациенток с повышенной величиной этого показателя (> 0,6) составляла 18,9 % (7/37), а с пониженным - 48,6 % (17/35); p = 0,012. Статистически значимых различий в ОВ в течение пяти лет между пациентками с повышенной и сниженной величиной данного показателя не наблюдалось.
Рис. 3. Взаимосвязь пятилетней безрецидивной (А) и общей (Б) выживаемости больных трижды негативным раком молочной железы с величиной соотношения CD8+CD28+/CD8+CD28- до начала химиотерапии
Синяя линия - величина соотношения > Me; красная линия - величина соотношения < Me; L-R - логранговый критерий; WCX- критерий Вилкоксона. Медиана БРВ в группе со сниженным показателем 44,3 %. В группе с повышенным показателем не достигнута. Медианы ОВ в обеих группах не достигнуты.
Отмечалась тенденция к уменьшению частоты развития рецидивов заболевания и увеличению частоты выживаемости больных со сниженным исходным количеством CD3-CD8+-лимфоцитов (рис. 4А, Б). Частота развития рецидивов заболевания у пациенток с повышенной величиной этого показателя составляла 38,5 % (15/39), а с пониженным - 27,3 % (9/33); p = 0,452. Была обнаружена высокая положительная корреляция количества CD3-CD8+-лимфоцитов с количеством CD3+CD16+CD56+-НК-клеток: ρ (95 % ДИ) = 0,715 (0,581-0,811), p = 0,000. В связи с этим определялось влияние исходного количества НК-клеток на БРВ и ОВ больных ТН РМЖ: отмечалась тенденция к неблагоприятному значению повышения исходного процента НК-клеток как для БРВ, так и для ОВ пациенток, хотя различия между сравниваемыми группами не были статистически значимы (рис. 4В, Г). Частота развития рецидивов заболевания у пациенток с повышенной величиной этого показателя составляла 40,0 % (16/40), а с пониженным - 25 % (8/32); p = 0,215.
Рис. 4. Взаимосвязь пятилетней безрецидивной (А, В) и общей (Б, Г) выживаемости больных трижды негативным раком молочной железы с количеством CD3-CD8+ (А, Б) и CD3-CD16+CD56+ (НК) (В, Г) лимфоцитов до начала химиотерапии
Корреляционная зависимость между количеством CD8+CD28+-лимфоцитов и стадией заболевания [ρ = -0,183 (95 % ДИ - 0,397-0,049); p = 0,113] была статистически незначимой. В то же время отмечалась слабая отрицательная статистически значимая корреляция количества CD8+CD28+-Т-клеток с возрастом [ρ = -0,320 (95 % ДИ -0,097 и -0,513), p = 0,005].
Обсуждение
ТН РМЖ является иммуногенной опухолью и индуцирует развитие как локального, так и системного врожденного и адаптивного иммунитета [23]. Основными клетками-эффекторами адаптивного противоопухолевого иммунного ответа являются цитотоксические CD8+-Т-лимфоциты (ЦТЛ) [24, 25]. Проведенный K. Wang и соавт. [26] метаанализ 23 исследований локального иммунного ответа у больных РМЖ, получавших химиотерапию, подтвердил, что наиболее значимым предиктором благоприятного клинического исхода был уровень CD8+-лимфоцитов в составе ЛИО, в особенности у пациенток с ТН РМЖ [26]. В настоящей работе у больных ТН РМЖ определялась значимость для клинической эффективности химиотерапии (цисплатин + паклитаксел) CD8+-популяций лимфоцитов-эффекторов системного иммунного ответа. Исследовалась взаимосвязь исходного уровня циркулирующих CD8+-клеток и их популяций (CD3+CD8+, CD8+CD28+, CD8+CD28-, CD3-CD8+) со степенью лечебного патоморфоза опухоли, прогрессированием заболевания и выживаемостью пациенток. Полученные результаты показали, что у пациенток с высокой степенью ЛПО, у больных без рецидива заболевания и у выживших больных количество CD8+CD28+-Т-лимфоцитов и величина соотношения CD8+CD28+/CD8+CD28--клеток были выше, чем у пациенток с низкой степенью ЛПО, с прогрессированием заболевания и у умерших больных. Позитивное значение этих иммунологических показателей подтвердило также их значение для БРВ и ОВ пациенток: повышенное исходное количество CD8+CD28+-Т-лимфоцитов ассоциировалось с увеличением как БРВ, так и ОВ. Увеличение БРВ наблюдалось также при повышении величины соотношения CD8+CD28+/CD8+CD28-клеток. Исходное количество CD8+-лимфоцитов и CD3+CD8+-Т-клеток не имело статистически значимого влияния на частоту БРВ и ОВ обследованных больных, что, скорее всего, связано с гетерогенностью этих популяций.
Результаты проведенного исследования позволяют предположить, что повышенное исходное количество CD8+CD28+-Т-лимфоцитов и повышенная величина соотношения CD8+CD28+/CD8+CD28 -клеток являются положительными предиктивными факторами у больных ТН РМЖ, леченных цисплатином и паклитакселом. CD8+CD28+-Т-лимфоциты включают в свой состав наивные клетки, клетки памяти и цитотоксические клетки-эффекторы [27, 28]. G. Song и соавт. [29] показали, что увеличение числа CD8+CD28+-Т-лимфоцитов коррелировало с увеличением выживаемости без прогрессирования (БРВ) больных метастатическим РМЖ, получавших химиотерапию. Хорошо известно, что рецептор CD28 является незаменимой костимуляторной молекулой Т-клеток, играющей ключевую роль в полноценной активации CD8+-ЦТЛ [30]. Современные исследования показывают, что потеря экспрессии маркера CD8+CD28+-Т-лимфоцитами может ассоциироваться с приобретением ими иммуносупрессивных свойств. Все большее число данных свидетельствуют о том, что CD8+-Т-клетки, не экспрессирующие рецептор CD28 (CD8+CD28-), являются уникальной субпопуляцией регуляторных Т-клеток, которые оказывают прямое супрессивное воздействие на Т-клетки-эффекторы, и их супрессорная активность показана при различных вариантах рака [24, 31]. По данным G. Song и соавт., высокий уровень циркулирующих CD8+CD28--T-лимфоцитов ассоциировался с плохим прогнозом заболевания у больных метастатическим РМЖ, получавших химиотерапию [29] или адоптивную Т-клеточную терапию после адъювантной химиотерапии [32]. Однако эти клетки функционально неоднородны и могут проявлять не только регуляторную, но и цитотоксическую активность в зависимости от патологического состояния и нозологического варианта опухоли. Например, у больных меланомой CD8+CD28--Т-клетки экспрессируют перфорин и вносят вклад в противоопухолевый иммунный ответ [24]. В настоящем исследовании исходное количество клеток данной популяции не имело значимого влияния на БРВ и ОВ пациенток, однако повышение величины соотношения CD8+CD28+/CD8+CD28-в пользу CD8+-лимфоцитов, экспрессирующих маркер CD28, имело позитивное значение для результатов лечения. Помимо Т-клеток с различной функциональной активностью, популяция CD8+-лимфоцитов включает в свой состав и НК-клетки, экспрессирующие этот маркер. Результаты показали, что количество CD3-CD8+-лимфоцитов ПК было выше у умерших пациенток, по сравнению с живыми: 7,5 % (4,5 % и 9,0 %) и 5,0 % (3,3 % и 7,4 %) соответственно. Отрицательное значение повышенного процента этих клеток до лечения было выявлено также при изучении кривых выживания, хотя различия между группами больных с повышенными и пониженными показателями не были статистически значимы. Частота развития рецидивов была выше в группе с повышенным числом этих клеток. Обнаруженная в работе высокая положительная корреляция между CD3-CD8+-клетками и CD3-CD16+CD56+-НК-клетками послужила основанием для определения влияния исходного числа НК-клеток на БРВ и ОВ пациенток. Сравнение кривых безрецидивного и общего выживания, как и в случае CD3-CD8+-лимфоцитов, показало, что повышение процента НК-клеток до лечения имеет в основном неблагоприятное, хотя и статистически незначимое влияние на выживаемость больных ТН РМЖ. Частота развития рецидивов была в 1,6 раза меньше у больных со сниженным показателем, чем у больных с повышенным процентов НК-клеток. Можно предположить, что обнаруженная в данном исследовании тенденция к отрицательному влиянию НК-клеток на результаты лечения больных ТН РМЖ во многом связана с наличием CD8+-популяции в их составе. Показано также, что НК-клетки могут оказывать не только положительное, но и отрицательное влияние на активность Т-клеток [33].
Обнаруженная в работе слабая отрицательная статистически значимая корреляция количества CD8+CD28+-Т-клеток с возрастом [ρ = -0,320 (95 % ДИ -0,097 и -0,513), p = 0,005] указывает на необходимость проведения подробного исследования взаимосвязи возраста с показателями иммунитета у больных ТН РМЖ с включением в него более значительного числа популяций лимфоцитов врожденного и адаптивного иммунитета.
Заключение
Полученные результаты позволяют предположить, что популяция CD8+CD28+-лимфоцитов ПК и величина соотношения CD8+CD28+/CD8+CD28- могут являться возможными иммунологическими предиктивными факторами у пациенток со II-III стадиями ТН РМЖ, получавших неоадъювантную химиотерапию цисплатином и паклитакселом.
Вклад авторов
Концепция и дизайн исследования - Заботина Т.Н.; Cбор и обработка материала - Гордеева О.О., Шоуа Э.К.; статистическая обработка - Черткова А.И., Борунова А.А.; написание текста - Черткова А.И., Заботина Т.Н.; редактирование - Кадагидзе З.Г.; утверждение окончательного варианта статьи - Заботина Т.Н., Кадагидзе З.Г., Мещеряков А.А.
Литература
1. Reis-Filho J.S., Tutt A.N.J. Triple negative tumours: a critical review. Histopathology. 2008; 52: 108-18.
2. Kumar P., Aggarwal R. An overview of triple-negative breast cancer. Arch. Gynecol. Obstet. 2016; 293 (2): 247-69.
3. Bianchini G., Balko J.M., Mayer I.A., Sanders M.E., Gianni L. Triple-negative breast cancer: challenges and opportunities of a heterogeneous disease. Nat. Rev. Clin. Oncol. 2016; 13 (11): 674-90.
4. Rivenbark A.G., O’Connor S.M., Coleman W.B. Molecular and cellular heterogeneity in breast cancer: challenges for personalized medicine. Am. J. Pathol. 2013; 183 (4): 1113-24.
5. Ali A.M., Ansari J.A.K., El-Aziz N.M.A., Abozeed W.N., Warith A.M.A., Alsaleh K. Triple negative breast cancer: a tale of two decades anticancer agents. Med. Chem. 2017; 17 (4): 491-9.
6. Voena C., Chiarle R. Advances in cancer immunology and cancer immunotherapy. Discov. Med. 2016; 21 (114): 125-33.
7. Wu J., Waxman D.J. Immunogenic chemotherapy: dose and schedule dependence and combination with immunotherapy. Cancer Lett. 2018; 419: 210-21.
8. Emens L.A., Middleton G. The interplay of immunotherapy and chemotherapy: harnessing potential synergies. Cancer Immunol. Res. 2015; 3 (5): 436-43.
9. Ye J.C., Formenti S.C. Integration of radiation and immunotherapy in breast cancer - treatment implications. Breast. 2018; 38: 66-74.
10. Zitvogel L., Kepp O., Kroemer G. Immune parameters affecting the efficacy of chemotherapeutic regimens. Nat. Rev. Clin. Oncol. 2011; 8 (3): 151-60.
11. Behren A., Thompson E.W., Anderson R.L., Ferrao P.T. Editorial: cancer plasticity and the microenvironment: implications for immunity and therapy response. Front. Oncol. 2019; 9: 276.
12. Denkert C., von Minckwitz G., Darb-Esfahani S., Lederer B., Heppner B.I., Weber K.E. et al. Tumour-infiltrating lymphocytes and prognosis in different subtypes of breast cancer: a pooled analysis of 3771 patients treated with neoadjuvant therapy. Lancet Oncol. 2018; 19 (1): 40-50.
13. Stovgaard E.S., Nielsen D., Hogdall E., Balslev E. Triple negative breast cancer - prognostic role of immune-related factors: a systematic review. Acta Oncol, 2018; 57 (1): 74-82.
14. Vihervuori H., Autere T.A., Repo H., Kurki S., Kallio L., Lintunen M.M. Tumor-infiltrating lymphocytes and CD8+ T cells predict survival of triple-negative breast cancer. J. Cancer Res. Clin. Oncol. 2019; 145 (12): 3105-14.
15. Baxevanis C.N., Sofopoulos M., Fortis S.P., Perez S.A. The role of immune infiltrates as prognostic biomarkers in patients with breast cancer. Cancer Immunol. Immunother. 2019; 68: 1671-80.
16. McAllister S.S., Weinberg R.A. The tumour-induced systemic environment as a critical regulator of cancer progression and metastasis. Nat. Cell. Biol. 2014; 16 (8): 717-27.
17. Spitzer M.H., Carmi Y., Reticker-Flynn N.E., Kwek S.S., Madhireddy D., Martins M.M. et al. Systemic immunity is required for effective cancer immunotherapy. Cell. 2017; 168 (3): 487-502.
18. Wang L., Simons D.L., Lu X., Tu T.Y., Avalos C., Chang A.Y. et al. Breast cancer induces systemic immune changes on cytokine signaling in peripheral blood monocytes and lymphocytes. EBioMedicine. 2020; 52: 102631.
19. He Q., Li G., Ji X., Ma L., Wang X., Li Y. et al. Impact of the immune cell population in peripheral blood on response and survival in patients receiving neoadjuvant chemotherapy for advanced gastric cancer. Tumour Biol. 2017; 39 (5): 1-8.
20. Lin K.R., Pang D.M., Jin Y.B., Hu Q., Pan Y.M., Cui J.H. et al. Circulating CD8+ T-cell repertoires reveal the biological characteristics of tumors and clinical responses to chemotherapy in breast cancer patients. Cancer Immunol. Immunother. 2018; 67 (11): 1743-52.
21. Zenan H., Zixiong L., Zhicheng Y., Mei H., Xiongbin Y., Tiantian W. et al. Clinical prognostic evaluation of immunocytes in different molecular subtypes of breast cancer. J. Cell. Physiol. 2019; 234 (11): 20 584-602.
22. Péguillet I., Milder M., Louis D., Vincent-Salomon A., Dorval T., Piperno-Neumann S. et al. High numbers of differentiated effector CD4 T cells are found in patients with cancer and correlate with clinical response after neoadjuvant therapy of breast cancer. Cancer Res. 2014; 74 (8): 2204-16.
23. Disis M.L., Stanton S.E. Immunotherapy in breast cancer: an introduction. Breast. 2018; 37: 196-9.
24. Huff W.X., Kwon J.H., Henriquez M., Fetcko K., Dey M. The evolving role of CD8+CD28- immunosenescent T cells in cancer immunology. Int. J. Mol. Sci. 2019; 20 (11): E2810.
25. Табаков Д.В., Заботина Т.Н., Захарова Е.Н., Борунова А.А., Короткова О.В., Черткова А.И. др. Субпопуляционный баланс эффекторных клеток периферической крови онкологических больных. Иммунология. 2019; 40 (3): 20-27. DOI: https://doi.org/10.24411/0206-4952-2019-13002
26. Wang K., Xu J., Zhang T., Xue D. Tumor-infiltrating lymphocytes in breast cancer predict the response to chemotherapy and survival outcome: a meta-analysis. Oncotarget. 2016; 7 (28): 44288-98.
27. He J. Folate-modified chitosan nanoparticles containing the ip-10 gene enhance melanoma-specific cytotoxic CD8(+)CD28(+) T lymphocyte responses. Theranostics. 2016; 6 (5): 752-61.
28. Fiorentini S., Licenziati S. Alessandri G., Castelli .F, Caligaris S., Bonafede M. et al. CD11b expression identifies CD8+CD28+ T lymphocytes with phenotype and function of both naive/memory and effector cells. J. Immunol. 2001; 166 (2): 900-7.
29. Song G., Wang X., Jia J., Yuan Y., Wan F., Zhou X. et al. Elevated level of peripheral CD8(+)CD28(-) T lymphocytes are an independent predictor of progression-free survival in patients with metastatic breast cancer during the course of chemotherapy. Cancer Immunol. Immunother. 2013; 62 (6): 1123-30.
30. Wang S., Chen L. T lymphocyte co-signaling pathways of the B7-CD28 family. Cell. Mol. Immunol. 2004; 1 (1): 37-42.
31. Chen X., Liu Q., Xiang A.P. CD8+CD28− T cells: Not only age-related cells but a subset of regulatory T cells. Cell. Mol. Immunol. 2018; 15: 734-6.
32. Song Q., Ren J., Zhou X., Wang X., Song G., Hobeika A. et al. Circulating CD8+CD28- suppressor T cells tied to poorer prognosis among metastatic breast cancer patients receiving adoptive T-cell therapy: a cohort study. Cytotherapy. 2018; 20 (1): 126-33.
33. Crouse J., Xu H.C., Lang P.A., Oxenius A. NK cells regulating T cell responses: mechanisms and outcome. Trends Immunol. 2015; 36 (1): 49-58.