Zusammenfassung
Hintergrund
Die Hymenopterengift-spezifische Immuntherapie (HG-SIT) ist sehr wirksam. Allerdings können trotz HG-SIT Patienten noch systemische Stichreaktionen entwickeln. Viele In-vitro-Parameter wie auch die Hauttestreaktivität ändern sich im Lauf der HG-SIT. Es gibt allerdings weder vor noch während der HG-SIT einen Parameter, der verlässlich die klinische Reaktionslage anzeigt. Eine Stichprovokation mit dem krankheitsursächlichen Insekt ist die einzige Methode, mit der sich die Wirksamkeit der HG-SIT überprüfen lässt.
Fragestellung
Dargestellt werden Indikationen, Kontraindikationen und Durchführung der Stichprovokation.
Material und Methoden
Es erfolgte eine Auswertung der Literatur.
Ergebnisse
Stichprovokationen werden weder zur Überprüfung der Indikation vor HG-SIT bei nicht therapierten Patienten mit Insektengiftallergie noch nach Beendigung einer HG-SIT empfohlen. Wesentliche Indikationen sind die Identifizierung von nicht durch die HG-SIT geschützten Patienten bzw. die Verbesserung der Lebensqualität durch einen vertragenen Stich. Wichtigste Kontraindikationen sind wiederholte Nebenwirkungen der HG-SIT oder eine Reaktion auf einen Feldstich während Erhaltungstherapie oder nicht adäquat eingestellte internistische Erkrankungen. Risikofaktoren für Therapieversagen sind Mastozytose, Bienengiftallergie, wiederholte Nebenwirkungen der HG-SIT und ACE-Hemmer. Bei erhöhter Erhaltungsdosis, Doppel-HG-SIT oder längerer Behandlungsdauer ist demgegenüber die Schutzrate erhöht.
Diskussion
Patienten, die die Stichprovokation vertragen, profitieren durch eine Verbesserung der Lebensqualität. Eine Stichprovokation ist vor allem für Patienten angeraten, die ein erhöhtes Risiko für Therapieversagen haben. Besteht dagegen kein erhöhtes Risiko für Therapieversagen, ist eine Stichprovokation nicht dringlich angezeigt. Eine Erhöhung der Erhaltungsdosis ist sowohl in der Prävention wie auch Therapie des Therapieversagens der HG-SIT wirksam.
Abstract
Background
Venom immunotherapy (VIT) is a highly effective treatment for Hymenoptera venom allergy. However, VIT treatment may fail to protect against systemic reactions. Many in vitro parameters as well as skin test reactivity change during the course of VIT; however, similar to the pre-treatment situation, there is no in vitro parameter, which reliably indicates the clinical reactivity of a sensitized patient. Sting challenge with the culprit insect is the only tool which reveals clinical reactivity.
Objectives
To define the indications, contraindications and performance of sting challenge tests.
Material and methods
Review of the literature.
Results
Sting challenge tests are not recommended for individuals who are not being treated with VIT, and are also not recommended as a routine diagnostic method for patients who have stopped VIT. Indications of sting challenge are identification of patients who are not protected, and quality of life issues. Major contraindications of sting challenge are repeated side effects or a field sting reaction during maintenance VIT, and unstable medical disease. Risk factors for treatment failure are mastocytosis, bee venom allergy, repeated side effects of VIT, and ACE inhibitors. Protection rate is significantly better in patients who are treated with elevated venom dose, with double VIT, and longer treatment duration.
Conclusions
For the majority of patients quality of life will significantly improve after tolerated sting challenge. A sting challenge test is particularly important in those patients who are at increased risk due their increased risk of treatment failure. If in patients with risk factors for treatment failure, VIT is done with elevated dose or if no risk factors are present, a sting challenge may not be needed. VIT with an elevated dose may prevent or correct treatment failure.
Literatur
Bonifazi F, Jutel M, Biló BM et al (2005) Prevention and treatment of hymenoptera venom allergy: guidelines for clinical practice. Allergy 60(12):1459–1470
Bousquet J, Ménardo J-L, Velasquez G et al (1988) Systemic reactions during maintenance immunotherapy with honey bee venom. Ann Allergy 61:63–68
Boyle RJ, Elremeli M, Hockenhull J et al (2012) Venom immunotherapy for preventing allergic reactions to insect stings. Cochrane Database Syst Rev 10:CD008838. doi:10.1002/14651858.CD008838.pub2
Chipps BE, Valentine MD, Kagey-Sobotka A et al (1980) Diagnosis and treatment of anaphylactic reactions to hymenoptera stings in children. J Pediatr 97:177–184
Ferreira Junior RS, Sciani JM, Marques-Porto R et al (2010) Africanized honey bee (Apis mellifera) venom profiling: seasonal variation of melittin and phospholipase A(2) levels. Toxicon 56:355–362
Fischer J, Teufel M, Feidt A et al (2013) Tolerated wasp sting challenge improves health-related quality of life in patients allergic to wasp venom. J Allergy Clin Immunol 132:489–490
Franken HH, Dubois AEJ, Minkema HJ et al (1994) Lack of reproducibility of a single negative sting challenge response in the assessment of anaphylactic risk in patients with suspected yellow jacket hypersensitivity. J Allergy Clin Immunol 93:431–436
Goldberg A, Confino-Cohen R (2010) Bee venom immunotherapy – how early is it effective? Allergy 65:391–395
Golden DB, Kagey-Sobotka A, Valentine MD et al (1981) Dose dependence of hymenoptera venom immunotherapy. J Allergy Clin Immunol 67:370–374
Graft DF, Schuberth KC, Kagey-Sobotka A et al (1987) Assessment of prolonged venom immunotherapy in children. J Allergy Clin Immunol 80:162–166
Haeberli G, Brönnimann M, Hunziker T et al (2003) Elevated basal serum tryptase and hymenoptera venom allergy: relation to severity of sting reactions and to safety and efficacy of venom immunotherapy. Clin Exp Allergy 33:1216–1220
Mosbech H, Malling H-J, Biering I et al (1986) Immunotherapy with yellow jacket venom. Allergy 41:95–103
Müller U, Berchtold E, Helbling A (1991) Honeybee venom allergy: results of a sting challenge 1 year after stopping successful venom immunotherapy in 86 patients. J Allergy Clin Immunol 87:702–709
Müller U, Helbling A, Berchtold E (1992) Immunotherapy with honeybee venom and yellow jacket venom is different regarding efficacy and safety. J Allergy Clin Immunol 89:529–535
Niedoszytko M, Monchy J de, Doormaal JJ van et al (2009) Mastocytosis and insect venom allergy: diagnosis, safety and efficacy of venom immunotherapy. Allergy 64:1237–1245
Przybilla B, Ruëff F, Walker A et al (2011) Diagnose und Therapie der Bienen- und Wespengiftallergie. Allergo J 20:318–339
Ring J, Beyer K, Biedermann T et al (2014) Akuttherapie anaphylaktischer Reaktionen. Allergo J Int 23(3):96–112
Ruëff F (2010) Monitoring venom immunotherapy. In: Ollert M (Hrsg) Hymenoptera venom allergy. The European Academy Allergy Monographs, S 63–67
Ruëff F, Antolin-Amerigo D, Biló MB et al (o J) EAACI Position Paper: sting challenge tests in patients with Hymenoptera venom allergy (In Vorbereitung)
Ruëff F, Przybilla B, Biló MB et al (2013) Clinical effectiveness of hymenoptera venom immunotherapy. A prospective observational multicenter study of the European Academy of Allergology and Clinical Immunology Interest Group on Insect Venom Hypersensitivity. PLoS One 8(5):e63233. doi:10.1371/journal.pone.0063233
Ruëff F, Vos B, Oude Elberink J et al (2014) Predictors of clinical effectiveness of hymenoptera venom immunotherapy. Clin Exp Allergy 44:736–746
Ruëff F, Wenderoth A, Przybilla B (2001) Patients still reacting to a sting challenge while receiving hymenoptera venom immunotherapy are protected by increased venom doses. J Allergy Clin Immunol 108:1027–1032
Schumacher MJ, Tveten MS, Egen NB (1994) Rate and quantity of delivery of venom from honeybee stings. J Allergy Clin Immunol 93:831–835
Urbanek R, Forster J, Kuhn W et al (1985) Discontinuation of bee venom immunotherapy in children and adolescents. J Pediatr 107:367–371
Walker A, Liptak J, Przybilla B et al (2010) Reliability of sting challenge tests in patients on hymenoptera venom immunotherapy. Allergy 65(Suppl 92):100
Worm M, Hompes S (2012) Das deutschsprachige Anaphylaxie-Register – Aktueller Stand und Perspektiven. Bundesgesundheitsbl Gesundheitsforsch Gesundheitsschutz 55:380–384
Einhaltung ethischer Richtlinien
Interessenkonflikt. F. Ruёff hat in den letzten 3 Jahren folgende Aufgaben wahrgenommen, die bei einem Artikel zur Insektengiftallergie als Interessenkonflikt wahrgenommen werden könnten: Referentin für ALK Abelló Arzneimittel GmbH, Novartis Pharma GmbH und HAL, Beratertätigkeit für ALK Abelló Arzneimittel GmbH, Bencard und DST GmbH. B. Przybilla war als Referent und Berater für ALK Abelló Arzneimittel GmbH tätig. Dieser Beitrag beinhaltet keine Studien an Menschen oder Tieren.
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Ruëff, F., Przybilla , B. Stichprovokation. Hautarzt 65, 796–801 (2014). https://doi.org/10.1007/s00105-014-2779-2
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